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很多同學(xué)都遇到過這個問題：自己養(yǎng)的細(xì)胞開始長的還挺好的，可是凍存之后復(fù)蘇會發(fā)現(xiàn)細(xì)胞狀態(tài)不好甚至完全復(fù)蘇不起來。出現(xiàn)這種問題很有可能就是你的凍存環(huán)節(jié)出了問題。

當(dāng)細(xì)胞冷到零度以下時，細(xì)胞器脫水，細(xì)胞中可溶性物質(zhì)濃度升高，并在細(xì)胞內(nèi)形成冰晶，冰晶的大小對細(xì)胞有影響是不同的，大冰晶容易造成細(xì)胞膜、細(xì)胞器的損傷和破裂，因此就會造成我們復(fù)蘇出來的細(xì)胞存活率、狀態(tài)等與凍存前的狀態(tài)相差甚遠(yuǎn)。那么我們要怎么解決這些問題呢？

首先我們在凍存的過程中要減少冰晶的形成，尤其是大冰晶的形成：緩慢凍存細(xì)胞，可使細(xì)胞內(nèi)避免產(chǎn)生大的冰晶。

那么我們該怎樣凍存細(xì)胞呢？

1、常規(guī)程序：

使用程序降溫盒

當(dāng)溫度在-25℃以上時，1-2℃/min。

當(dāng)溫度在-25℃以下時，5-10℃/min。

當(dāng)溫度達(dá)到-100℃時，可迅速轉(zhuǎn)入液氮中。

2、簡易程序：

冷凍管管口朝上，放入紗布袋內(nèi)，紗布袋系以線繩，通過線繩將紗布袋固定于液氮罐罐口，按每分鐘下降1-2℃的速度，在40min內(nèi)降至液氮表面過夜，次晨投入液氮中。

3、傳統(tǒng)程序：

冷凍管置于4℃ 10min，-20℃ 30min，-80℃  16-18h（或隔夜），液氮長期儲存。

常用的低溫保護(hù)劑是DMSO，它是一種滲透保護(hù)劑，可迅速透入細(xì)胞，提高細(xì)胞膜對水的通透性，降低冰點(diǎn)，延緩凍結(jié)過程，能使細(xì)胞內(nèi)水分在凍結(jié)前透出細(xì)胞外，在胞外形成冰晶，減少胞內(nèi)冰晶，從而減少冰晶對細(xì)胞的損傷。

1、預(yù)先配制凍存液：

凍存液比例多種，根據(jù)細(xì)胞的特性進(jìn)行調(diào)整凍存液的比例：

5%—10%DMSO+20%—90%血清+0%—70%基礎(chǔ)培養(yǎng)液；

2、取對數(shù)生長期的細(xì)胞，去除舊培養(yǎng)液，用PBS清洗1-2次；去掉培養(yǎng)瓶里的殘余血清；

3、加入適量胰酶（濃度一般為0.25%），使胰酶覆蓋整個瓶，放入培養(yǎng)箱消化；

4、細(xì)胞消化0.5-2min（具體時間根據(jù)鏡下形態(tài)判斷），顯微鏡下觀察細(xì)胞，細(xì)胞胞質(zhì)回縮，細(xì)胞間不再連接成片，此時加入完全培養(yǎng)基終止消化；

5、用巴氏吸管輕輕吹打細(xì)胞，形成細(xì)胞懸液，將細(xì)胞懸液1000r/min左右條件下離心3-5min；

6、棄上清，加入適量預(yù)先配制好的凍存液，巴氏吸管輕輕吹打使細(xì)胞均勻，計(jì)數(shù)，調(diào)節(jié)凍存液中的細(xì)胞最終密度為5×10⁶/ml～1×10⁷/ml；

7、將細(xì)胞分裝入凍存管中，每管1-1.5ml；

8、凍存管標(biāo)記細(xì)胞名稱，凍存時間，操作者及細(xì)胞代數(shù)信息。

對于懸浮細(xì)胞凍存，則直接收集離心細(xì)胞，除去胰酶消化的步驟，其他步驟相同。

1、需凍存保種的細(xì)胞應(yīng)在生長良好且存活率高，其密度約為80-90％的狀態(tài)。細(xì)胞凍存前應(yīng)保證細(xì)胞的活力好，無污染。

2、在細(xì)胞凍存過程中，所結(jié)的冰晶對細(xì)胞傷害較大，所以過程一定要慢。凍存或者復(fù)蘇最好用新配制的培養(yǎng)液。

好，今天關(guān)于細(xì)胞凍存

相關(guān)實(shí)驗(yàn)技巧和操作方法以及注意事項(xiàng)

就說到這里

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